秒速飞艇官网开奖号码FULLY HUMANIZED ANTI-CD20 MONOC

2018-05-20 09:38 点击:

  1. 一种抗 CD20的全人源单克隆抗体, 所述抗体具有重链可变区和轻链可变区, 所述重链可变区和轻链可变区各自具有 3个互补决定区 (CDR), 其中,

  3. 如权利要求 2所述的抗体, 其中所述抗体的重链可变区和轻链可变区为:

  4. 如权利要求 1〜3中任一项所述的抗体, 所述抗体的重链恒定区为人 IgGl重 链的恒定区, 所述抗体的轻链恒定区为人 κ链的恒定区。

  5. 如权利要求 1〜4中任一项所述的抗体, 所述抗体在其可变区以外的区域的氨 基酸序列中具有一个或多个保守性突变。

  6. 一种多核苷酸, 所述多核苷酸编码权利要求 1〜5中任一项所述的抗体。

  8 一种抗 CD20的结合物,所述结合物包含与同位素、免疫毒素和 /或化学药物共 价连接的权利要求 1〜5中任一项所述的抗体。

  9. 一种偶联物, 所述偶联物为权利要求 1〜5中任一项所述的抗体或权利要求 8 所述的结合物与固体介质或半固体介质偶联而形成的。

  10. 权利要求 1〜5中任一项所述的抗体、权利要求 8所述的结合物或权利要求 9 所述的偶联物在制备用于治疗下述疾病的药物中的应用, 所述疾病选自炎性疾病、 自 身免疫性疾病、 细胞增殖病症、 心血管病、 血液病, 进一步的, 为: 非霍奇金氏淋巴 瘤、 B细胞淋巴瘤、 风湿性和类风湿性疾病、 系统性红斑狼疮、 免疫性血小板减少性 紫癜和 /或多发性硬化症。

  11. 一种药物组合物, 所述药物组合物包含权利要求 1〜5中任一项所述的抗体、 权利要求 8所述的结合物和 /或权利要求 9所述的偶联物。

  12. 一种用于诊断炎性疾病、 自身免疫性疾病、 细胞增殖病症、 心血管病、 血液 病, 尤其是非霍奇金氏淋巴瘤、 B细胞淋巴瘤、 风湿性和类风湿性疾病、 系统性红斑 狼疮、 免疫性血小板减少性紫癜和 /或多发性硬化症的试剂盒, 所述试剂盒包含权利 要求 1〜5中任一项所述的抗体、 权利要求 8所述的结合物和 /或权利要求 9所述的偶 联物。

  13. 一种治疗炎性疾病、 自身免疫性疾病、 细胞增殖病症、 心血管病、 血液病, 尤其是非霍奇金氏淋巴瘤、 B细胞淋巴瘤、风湿性和类风湿性疾病、系统性红斑狼疮、 免疫性血小板减少性紫癜和 /或多发性硬化症的方法, 所述方法包括向有需要的患者 施用治疗有效量的权利要求 1〜5中任一项所述的抗体、 权利要求 8所述的结合物、 权利要求 9所述的偶联物和 /或权利要求 11所述的药物组合物。Description:抗 CD20的全人源单克隆抗体及其应用 技术领域

  本发明涉及抗体药物的技术领域。 具体地说, 涉及一组全人源单克隆抗体新分子, 其可用于淋巴瘤的诊断和治疗。 背景技术

  CD20是一种分子量为 33〜37 kDa的非糖基化磷蛋白,有 4个跨膜区,氨基端和 羧基端都位于细胞质膜内侧, 在第三跨膜区和第四跨膜区之间, 有一个由 43个氨基 酸残基组成的环区, 构成其主要的抗原表位。 作为 B淋巴细胞表面分化抗原, 它起 始表达于 pre-B细胞阶段,到 B细胞终端分化成浆细胞时结束,一直被认为是 B系细 胞表面特有的标识。 它主要参与调节 B淋巴细胞的增殖与分化, 在免疫系统起重要 作用。 80%~85%的非霍奇金氏淋巴瘤 (NHL)为 B细胞来源, 并且这些细胞的约 95% 均有表面 CD20表达[12]。 CD20的表达因淋巴瘤细胞的不同而有所差异, 滤泡性淋巴 瘤细胞表面表达较高, 小细胞淋巴瘤白血病细胞表面表达较低, 在干细胞和浆细胞中 不表达,慢性 B淋巴白血病细胞中的表达远低于正常的 B细胞和其他 B淋巴瘤细胞, CD20 的表达高低在一定程度上决定了抗体和补体杀伤瘤细胞的程度[3]。 单核细胞、 静息以及激活的 T细胞、裸细胞以及非淋巴细胞都不表达 CD20分子。 CD20与抗 CD20 抗体结合后内化现象不明显,细胞表面 CD20分子数量并不因为与抗体结合而大量减 少, CD20也不会发生明显细胞表面脱落的现象, 因此, CD20是免疫治疗 B细胞淋 巴瘤的理想作用位点, 特别是对治疗惰性、 复发难治性 B 细胞淋巴瘤有较肯定的疗 效。

  抗 CD20治疗可清除恶性 B细胞和部分正常 B细胞, 但由于干细胞和 B细胞前 体不表达 CD20, 因而不会造成长期 B细胞损耗。 其临床应用主要适应证为: 1.单纯 应用抗 CD20单克隆抗体治疗滤泡性 B细胞型非霍奇金淋巴瘤; 2. 抗 CD20单克隆 抗体与化疗联合应用治疗弥漫大 B细胞型淋巴瘤及慢性 B淋巴细胞白血病 (B-CLL)。

  IDEC-C2B8, 又名 Rituximab, 商品名为美罗华, 1997年由 FDA批准上市, 是第 一个被美国 FDA批准用于治疗肿瘤的单克隆抗体[4]。 它是一个人鼠嵌合抗体, 包含 鼠源抗 CD20单克隆抗体 2B8 (Ibritumomab)的可变区和人源 IgGl重链及 κ链的恒定 区, 用于 Β细胞淋巴瘤的治疗。 Rituximab在体内通过抑制细胞增殖或触发多种细胞 破坏机制, 包括抗体依赖性细胞毒作用 (ADCC)和补体依赖性细胞毒作用 (CDC)以及 细胞凋亡发挥明显的抗肿瘤功效[5]。 近年的临床研究证实, 该药治疗谱较广, 对 B淋 巴细胞性疾病均可取得较好的疗效。

  2002年 2月, FDA批准了第一个放射性免疫治疗药物 Zevalin。 该药由 IDEC制 药公司生产, 通用名 Ibritumomab Tiuxetan。 FDA批准此药用于治疗复发性或难治性 低恶性度 /滤泡性或转化的 B细胞 NHL, 其中包括 Rituximab难治性的滤泡性 NHL。 该产品由小鼠 IgGl-κ单克隆抗体 2B8 (Ibritumomab)连接同位素9QY用于肿瘤治疗。 其单抗部分对 CD20具有高的特异亲和性[6]。

  2009年 10月 26日, FDA批准 ARZERA Ofatumumab)用于治疗慢性淋巴细胞性 白血病 (CLL)。 它由 KM人源转基因鼠免疫通过杂交瘤技术产生的人单克隆抗体。 和 Rituximab相似其在体内通过抑制细胞增殖或触发多种细胞破坏机制, 包括抗体依 赖性细胞毒作用 (ADCC)和补体依赖性细胞毒作用 (CDC)以及细胞凋亡发挥明显的抗 肿瘤功效。 但其在治疗非霍奇金氏淋巴瘤 (NHL)的三期临床试验失败。 目前其主要用 于对一线化疗药物耐受的慢性淋巴细胞性白血病。

  Rituximab可单独应用, 推荐的使用剂量是每周 375毫克 /平方米, 静脉内注射, 共 4次, 治疗复发或耐药性低度恶性 CD20阳性 B细胞 NHL; II期临床试验表明, 总体有效率为 48%, 其中 6%为完全有效, 42%为部分有效, 缓解期通常为 1年。 对 于初治的低度恶性 NHL, 单药有效率为 50%〜70%左右, 维持治疗能够进一步提高 疗效。 副作用较温和, 可随抗体输入量的减少而减轻, 治疗中没有或少有感染并发症 发生。 因而 Rituximab作为一线药物应用治疗 NHL已有着无法替代的作用。

  2004年, 欧盟许可 Rituximab联合标准化疗以治疗侵袭性 NHL。 一些临床试验 用来评估 Rituximab单独或联合治疗惰性、 侵袭性 NHL和其他一些 B细胞淋巴组织 增生紊乱。 Rituximab对类风湿性关节炎、 免疫性血小板减少性紫癜、 免疫性溶血性 贫血、 系统性红斑狼疮和多发性硬化等自身免疫紊乱性疾病的作用也在研究中[7]。

  类风湿关节炎 (rheumatoid arthritis, RA)是一种以滑膜炎为主要病理改变的全身性 自身免疫病, 以慢性破坏性关节病变为特征。 B细胞是类风湿因子 (RF)、 抗瓜氨酸抗 体 (抗 CCP)等自身抗体的主要来源细胞, 同时研究表明 RA滑膜中 T细胞活化主要依 赖于 B细胞抗原呈递作用[9], 是 RA等自身免疫病发病机制核心环节之一。

  系统性红斑狼疮 (; systemic lupus erythematosus, SLE)是多系统受累、 以多种自身抗 体表达的自身免疫性疾病。 B细胞在 SLE发病机制中发挥了关键性作用: 分泌大量 致病性自身抗体和白介素 10 (IL-10)、 白介素 6 (IL-6)、 肿瘤坏死因子 (TNF-γ)等多种 细胞因子; 高选择性的抗原呈递作用, 将抗原呈递给 T细胞, 同时剌激调节 T细胞、 树突状细胞活化[11]。

  Looney等[12]报道了 17例 Rituximab治疗 SLE的 Ι/Π期扩大临床试验, 均为活动 性狼疮。 大部分患者同时接受免疫抑制剂治疗。 分为三组接受低、 中、 高不同剂量的 Rituximab, 分别为 100mg/m2、 275mg/m2、 375mg/m2每周 1次、 共 4周。 结果表明疾 病控制与 B细胞清除情况有关。 11例 B细胞清除 (CD19阳性细胞5/1;1)患者皮疹、发 热、 关节痛等临床症状可缓解。系统性红斑狼疮活动评分 (SLAM)多在用药 2〜3个月 时缓解, 持续 12个月。 初步临床研究证明 Rituximab治疗 SLE是可行的,其疗效和安全性期待大样本临 床研究。

  免疫性血小板减少性紫癜 (immunologic thrombocytopenic purpura, ITP)是一种自 身免疫性出血性疾病。 目前研究证明, ITP患者 T淋巴细胞调节紊乱, 导致 B淋巴细 胞功能紊乱, 产生针对自身血小板的 IgG抗体, 进而使血小板破坏增多。 文献报道 Rituximab可快速持久地清除循环中的 B淋巴细胞, 减少自身抗体的产生, 从而减少 血小板的破坏。 Taube等[13]使用 Rituximab治疗了 22例慢性 ITP患儿, 在 Rituximab 用后的 1〜2周外周血 CD20阳性 B淋巴细胞呈明显下降, 2〜3个月后逐渐恢复正 常。 结果 7例完全缓解, 6例部分缓解, 5例复发, 反应率为 59% (13/22), 复发率为 38% (5/13), 持续缓解的时间是 2〜16个月。 石淑文等[14]用 Rituximab治疗了 3例小 儿慢性 /难治性 ITP, 3例均为联合用药, 1例联合阿赛松治疗部分缓解, 治疗后患儿 血小板持续维持相对较高的水平达 18个月之久,且不再需要 IVIG冲击治疗,阿赛松 逐渐减量至停用, 余两例分别联合了大剂量 IVIG、 琥珀酸氢化考的松和长春新碱, 治疗后血小板有短暂的回升 (分别是 21天和 11天), 但很快又降至同入院前的低水平 且持续不见回升, 认为短暂的血小板回升可能是大剂量 IVIG、 琥珀酸氢化考的松或 长春新碱的作用,为不缓解病例。上述结果表明 Rituximab对 ITP有较好的治疗作用, 能够快速持久地清除循环中的 B 淋巴细胞, 减少自身抗体的产生, 从而减少血小板 的破坏,可作为临床用药。但部分病例这种清除是暂时的, 停用 Rituximab后循环中的 B淋巴细胞又会恢复, 这可能和部分病人再次复发有关。 关于 Rituximab 治疗慢性 / 难治性 ITP的总反应率成人为 23〜75%[15], 儿童为 66%, 基本相同。

  20世纪 70年代中期杂交瘤技术问世, 由此制备出的单克隆抗体 (MAb)是抗单一 抗原决定簇的抗体, 具有高度的特异性和均一性, 且能大量制备, 这成为抗体研究领 域的一次重大革命。 1986年, 应用此技术制备的第一个单克隆抗体药物 OKT3被美 国 FDA批准上市, 被用于治疗后的免疫排斥。 但由于抗体是鼠源的, 在病 人中引发了严重的免疫反应, 这就大大阻碍了抗体药物的发展和利用。

  随着抗体被用来开发成药物, 它的一些特征也将被严格考量, 像免疫原性、 亲和 力、 稳定性、 效应功能、 半衰期、 组织渗透性及其分布等[21]。 在鼠源 MAb生产变得 成熟时, 研究者便预想通过常规的杂交瘤技术生产人源 MAb, 但由于人杂交瘤细胞 系不能稳定的生产高产量的抗体,并且对于很多抗原来说,人的体内免疫是不可行的。 这样, 基因工程抗体由然而生, 1994年, 第一个嵌合抗体 ReoPro获准上市, 临床应 用表明其免疫原性远优于鼠源抗体,这就掀起了继杂交瘤单克隆抗体之后抗体工程研 究领域的又一次革命。 特别是 90年代中期以来, 为进一步降低免疫反应的发生, 多 种人源化改造技术被成功开发并得以应用,各种各样的基因工程抗体及抗体库不断出 现[23] [24], 使得大规模生产医用人源化抗体成为可能。 从 1997年开始, 大批的单抗药 物被 FDA批准上市。

  单抗人源化改造技术的应用打破了抗体药物产业化的瓶颈。迄今, 按照人源化程 度的高低大体可分为三种技术: 嵌合、人源化和全人源, 其基因中人源序列占比分别 为 75%、 95%和 100%[22]。 其中嵌合抗体是将鼠杂交瘤单克隆抗体基因的可变区和人 的恒定区连接在一起, 然后在哺乳动物细胞中进行表达产生; 而人源化抗体则是除了 将抗体的恒定区换成人源的之外, 更进一步的将可变区的 FR区转换成人源的[2()], 从 而降低免疫原性; 而全人源抗体制备则是有四种途径,一种从采集的病人血样中构建 Fab或者 ScFv文库, 并通过噬菌体展示筛选抗体库, 来产生人源 MAb[18]。 2002年, 第一个全人源 MAb, Humira, 就是通过噬菌体展示开发出来的。 第二种生产人源抗 体的策略是用含有人免疫球蛋白基因位点的转基因小鼠, 进行免疫, 可以产生人抗体 的免疫应答, 这样通过传统的杂交瘤技术可以来生产人源 MAb[17], 从转基因小鼠衍 生而来的人源 MAb正在临床试验中。 第三种途径是通过分离培养人外周血淋巴细胞 或扁桃体淋巴细胞, 然后用抗原进行免疫剌激, 产生免疫应答, 然后再和人类骨髓瘤 细胞融合产生杂交瘤细胞, 经筛选得到人源单克隆抗体, 并立即进行分子克隆抗体基 因, 使用其他可长期稳定表达的哺乳动物细胞来表达目的抗体, 这种抗体完全是在人 细胞环境中生成的。 第四类途径是通过分离和低密度 (约 500 B细胞每 96孔) 培养 人外周血淋巴细胞或扁桃体淋巴细胞, 对培养上清进行抗原特异性筛选, 对阳性孔 B 细胞进行分子克隆获得人抗体基因,再使用其他可长期稳定表达的哺乳动物细胞来表 达目的抗体。

  本发明的全人源单克隆抗体就是基于上述第三种途径并加以随机突变筛选得来 的。 利用人-人杂交瘤产生的单克隆抗体被认为是在氨基酸序列和糖基化谱上都要优 于嵌合抗体和人源化抗体的全人源抗体。 但是由于难以找到使人 -人杂交瘤稳定传代 的融合伴侣细胞, 且由于融合效率低、 细胞培养困难及生产能力低等问题, 制备稳定 传代且能持续产生单克隆抗体的人-人杂交瘤细胞系一直存在较大难度, 且成功的实 例甚少。 本发明对表达人抗体的人-人杂交瘤快速进行包括特异性和功能学在内的筛 选,并将筛选出的杂交瘤细胞进行分子克隆化以保存抗体基因,从而克服了上述困难。

  随着人源化和全人源抗体技术的成熟,如何提高抗体的亲和力成了目前所有基因 工程抗体药物需要解决的关键问题。这是因为增加一个抗体的亲和力将降低抗体药物 的剂量并起到更好的生物活性,还可能使其治疗更多的疾病及降低剂量相关的毒性[18][22]。 此外, 费用也将大大降低。 多项独立的研究表明, 抗体亲和力和生物学活性在达 到极限值之前是成线性关系的。 围绕这一问题人们已经从不同的方向展开了研究, 提 高抗体亲和力的途径基本有两条途径, 其中一个途径是通过随机突变 CDR或是整个 的 VR, 然后从这个大量的突变体库里筛选更高亲和力的抗体[19]; 另一个途径是通过 集中突变或是建模模拟体内亲和力成熟的热点区域, 建立一个小的突变体库[18] [19]。 综合起来说, 当进行体外抗体亲和力成熟时, 应考虑 4个主要方面: ①在抗体基因的 何处导人突变; ②如何导入突变; ③如何从较低亲和力的抗体中选择稀有的更高亲和 力抗体。 ④如何鉴别更高亲和力抗体。

  目前已批准上市的三种针对 CD20的抗体均为 Biogen-Idec公司创制。其中 Zevalin 和 Bexxar为鼠源单抗, 并且主要是通过抗体介导放射性同位素到肿瘤部分, 发挥放 射性细胞毒直接杀伤肿瘤细胞。 由于放射毒性和人抗鼠抗体的产生等因素, 导致临床 疗效不佳, 适应症狭窄。 Rituxan (即 Rituximab)系人鼠嵌合型抗 CD20单克隆抗体, 其可通过 CDC、 ADCC、 诱导 CD20 细胞发生凋亡或直接抑制恶性 B细胞的增殖来 发挥其治疗效果且都获得了很好的疗效。但是由于其 25%鼠源部分, 更容易产生鼠源 性免疫原性,即人抗鼠抗体反应。这将会引起较多的输液反应, 同时也无法长期用药。 因为在病人血清中循环的人抗鼠抗体将会中和 Rituxan而使其疗效下降甚至失效。 此 外 Rituxan本身杀瘤疗效还存在着提高的空间, 例如其目前临床有效率 (CR+PR) 约 为 50%, 不能连续用药, 而且缓解期只有一年, 因此有必要发明新的抗体分子来提升 此类药物的疗效[29]。 本发明正是针对 Rituximab不足之处而进行的新分子创制: (1 ) 变鼠人嵌合抗体为全人源抗体(2)通过新药物的提升,使其针对其他瘤细胞的 CDC, ADCC和凋亡能力增强以提高杀瘤疗效。 发明内容

  本发明提供抗 CD20的一组新抗体, 这些抗体为全人源抗体, 并且作为一种新药 物, 这些抗体的多项 CD20特异性的细胞毒功效比美国同类药物美罗华强, 具有比美 罗华相同或更好的药效。可用于治疗和诊断炎性疾病、 自身免疫性疾病、 细胞增殖病 症、 心血管病、 血液病, 尤其是非霍奇金氏淋巴瘤、 B细胞淋巴瘤、 风湿性和类风湿 性疾病、 系统性红斑狼疮、 免疫性血小板减少性紫癜和 /或多发性硬化症等疾病。

  而且,本发明的抗体并不限于人 IgG和人 κ链,本发明抗体的可变区以外的区域 可以是其他类型, 例如人 IgM等。

  本领域技术人员将知晓的是,上述抗体中的保守性氨基酸替换并不会实质性地影 响抗体的亲和力和结构, 尤其是所述保守性替换发生在恒定区时。本领域技术人员还 知晓, 根据上述抗体的氨基酸序列可以设计出编码其的核苷酸序列, 并且针对不同的 表达宿主对该核苷酸序列进行优化。 为了治疗、 检测、 实验或其他目的, 本发明的抗 体可以与同位素、 免疫毒素和 /或化学药物共价连接, 还可以与固体介质、 半固体介 质偶联, 还可以使用本发明的抗体的功能性片段, 这在本领域中是已知的。

  本发明提供了一种方法, 使用该方法制造全人源抗体并且作为一种新药物。 目前 尚未有抗体药物系使用本发明的技术方法成功创制的报道。该方法所克服的最重要的 技术难点是 (1 ) 人淋巴细胞体外有效免疫技术; (2) 人杂交瘤基因不稳定, 必须快 速进行包括特异性和功能学在内的筛选,并将筛选出的杂交瘤细胞进行分子克隆化以 保存抗体基因; (3 )对已筛选出具有一定药理学功效的人源抗体通过分子生物学抗体 工程技术进行进一步优化改造。

  所述抗体的制造及相关检测方法如下:通过提取不同人的外周血淋巴细胞或者是 人扁桃体淋巴细胞, 体外混合后, 用抗原和具有佐剂功用的分子共培养, 使其产生针 对抗原的抗体, 通过与骨髓瘤细胞融合, 产生临时稳定的人杂交瘤, 培养上清中含有 其分泌的人源抗体。 通过细胞 ELISA (CD20阳性细胞和 CD20阴性细胞双筛选) 筛 选出 CD20阳性杂交瘤细胞生长孔, 再以相对抗原亲和力, 细胞毒功能测试(ADCC、 CDC和凋亡实验)综合评估筛选最好的 10个细胞生长孔, 并立即进行亚克隆, 筛选 出保持抗原特异性的单克隆细胞株。立即进行测序和分子克隆抗体基因到适当的表达 载体中, 并将质粒 DNA扩增纯化于 -8CTC永久保存。根据相对抗原亲和力, 细胞毒功 能测试(ADCC、 CDC和凋亡实验)综合评估筛选最好的 3个单克隆细胞株的抗体基 因,以此作为模板对其进行体外抗体亲和力成熟工程。我们以对 CDR1、 CDR2、 CD 3 区进行随机突变和定点突变相结合的方式建立抗体亲和力成熟突变文库。以抗原特异 性和相对亲和力排序对文库进行筛选。 将每轮最好的 5〜10 抗体的重链可变区 (VH) 和轻链可变区 (VL)进行全排列组合形成全长抗体。 使用瞬转、 培养和微量亲和纯化 (Protein A )制备少量纯化抗体, 以细胞毒功能测试(ADCC、 CDC和凋亡实验)进 行筛选鉴定。在经此筛选出来的一组有良好细胞毒功效的抗体分子, 再对这些抗体可 变区特别是 CDR区序列检索, 确定此组具备 CD20特异性的细胞毒功效的抗体为首 次发现的新分子。在此组新分子里有一个或一个以上的新抗体分子其(1 )多项 CD20 特异性的细胞毒功效比美罗华强; (2 )皮下移植瘤和生存期的试验结果显示其具有比 美国同类药物美罗华相同和更好的药效。

  在确定本发明的抗体的氨基酸序列后,可以通过人工合成编码该抗体的多核苷酸 并选取适合的宿主进行有效地表达来制备该抗体, 这在本领域中是公知的。

  除非特别说明, 在本文中 Rituxan、 Rituximab和 美罗华可以互换使用。 附图说明

  8. 源自细胞株 1.105.3的轻链经突变得到的 L1〜L20根据亲和力的排序;对应的结果 数据和 KD值参见表 6;

  图 9. 经筛选的重链突变基因和轻链突变基因组合的根据亲和力的排序; 对应的 结果数据和 KD值参见表 7;

  图 10显示了抗体 H2L10治疗人 B细胞淋巴瘤的小鼠 Raji细胞侵润瘤模型的药 效学试验结果, 是对小鼠体重和健康状态的观察。 静脉注射 107Raji淋巴瘤细胞形成 小鼠淋巴瘤疾病模型。 分五组分别为 1.生理盐水组、 2.美罗华组、 3.H2L10 (;即本发明 的代表性抗体)低剂量组、 4.H2L10中剂量组和 5.H2L10高剂量组。 癌细胞静脉注射 后 7天开始给药。腹腔注射每周一次。 图中为各组动物体重变化。 生理盐水组动物自 第 16天后开始明显下降并呈肿瘤恶液质。美罗华组在第 37天开始出现体重明显下降, 总体呈亚健康状态直至第 50天试验结束。 而 H2L10高中低三组动物均呈健康状态, 体重正常增长。 此结果清楚表明 H2L10 和美罗华均对淋巴瘤动物有肯定的疗效, H2L10各组包括低剂量组疗效均优于美罗华。

  图 11显示了抗体 H2L10治疗人 B细胞淋巴瘤的小鼠 Raji细胞侵润瘤模型的生存 期试验结果。 静脉注射 107Raji淋巴瘤细胞形成小鼠侵润型淋巴瘤疾病模型。 分五组 分别为 1.生理盐水组、 2.美罗华组、 3.H2L10低剂量组、 4.H2L10中剂量组和 5.H2L10 高剂量组。癌细胞静脉注射后 7天开始给药。腹腔注射每周一次。 生理盐水组动物自 第 23天开始明出现死亡, 到第 34天全部死亡。 美罗华组和 H2L10高中低三组动物 均无死亡直至第 50天试验结束。但美罗华组在第 37天开始出现体重明显下降, 并总 体呈亚健康情况直至 50天试验结束。此结果清楚表明 H2L10和美罗华均可肯定地延 长淋巴瘤动物的生存时间。

  图 12显示了抗体 H2L10治疗人 B细胞淋巴瘤小鼠 raji细胞原位移植瘤抑瘤实验 结果。 小鼠接种后观察肿瘤生长情况, 待肿瘤体积为 40-100 mm3左右时, 按瘤体积 大小进行筛选, 瘤体积过大及未成瘤者不予入选。 筛选后随机分为 3组: 1.生理盐水 组、 2.美罗华组、 3.H2L10。 给药剂量 5mg/kg, 腹腔注射每周一次。 试验结果清楚表 明美罗华和 H2L10均可以明显抑制 Raji细胞皮下移植瘤的生长, H2L10药效和美罗 华有同等药效。

  图 15显示了 A137和美罗华的亲和力测试结果, 图中的表格显示出了其相关参 数 Bmax和 KD及置信区间。

  图 16显示了 A137和美罗华的治疗人 B细胞淋巴瘤小鼠 raji细胞原位移植瘤的 结果。 每只小鼠静脉注射 107个 Raji淋巴瘤细胞形成小鼠侵润型淋巴瘤疾病模型, 5 天后腹膜内注射给药。 分 3组小鼠进行实验 (;每组 8只): A. 生理盐水对照组; B. 美 罗华组 (剂量为 1 mg/kg体重); C. A137组 (剂量为 1 mg/kg体重)。

  图 17显示了用 A137和美罗华的治疗人 B细胞淋巴瘤小鼠 raji细胞原位移植瘤 时的小鼠体重变化曲线。 每只小鼠静脉注射 107个 Raji淋巴瘤细胞形成小鼠侵润型 淋巴瘤疾病模型, 5天后腹膜内注射给药。 分 4组小鼠进行实验 (;每组 8只): A. 生理 盐水对照组; B. 美罗华高剂量组 (3 mg/kg体重); C. 美罗华低剂量组 (1 mg/kg体重); 0. 137组(1 mg/kg体重)。 具体实施方式

  下文将通过具体的实施例来阐明本发明, 但应理解的是, 以下实施例并不限制本 发明的范围。

  使用细胞膜蛋白与细胞浆蛋白抽提试剂盒 (购自碧云天生物研究所) 由 CD20-293F细胞依循试剂盒说明书抽提 CD20膜蛋白。用 0.22微米滤器过滤后分装于 1.5毫升细胞冻存管 -80°C保存。

  无菌摘取慢性扁桃体炎新鲜组织样本 (与徐州医学院附院耳鼻喉科合作, 扁桃体 取自扁桃体摘除手术的病人, 10例病人, 年龄 5〜10岁), 用淋巴细胞分离液 (GE)分 离出其中的淋巴细胞, 取 30xl06个; 无菌抽取人新鲜外周血细胞, 用淋巴细胞分离 液 (GE)分离出其中的淋巴细胞, 取 30xl06个。

  将 1.2中的两种来源的 16位个体淋巴细胞混合后在含 20%FBS的 RPMI-1640培 养基中进行混合培养, 淋巴细胞终浓度为 5xl05个 /ml, 同时加入下述步骤 2.1中获得 的小鼠腹腔伺养细胞 (终浓度为 lxlO5个 /ml)、 非必需氨基酸 (终浓度为 lug/ml)、 CD20抗原(蛋白免疫: 终浓度为 lug/ml, 细胞膜免疫组: 源于 106个 CD20-293细胞 的细胞膜蛋白 /ml), 并放于二氧化碳培养箱中共培养 6-12天(第 5-6天换一次新鲜培 养液)。

  在融合前一天,断颈处死 BALB/c小鼠 (从北京维通利华实验动物技术有限公司购 买), 浸泡于 75%酒精中 5分钟, 在超净台内, 无菌操作下用剪刀剪开腹部皮肤, 露 出腹膜,用注射器注入腹腔内 10 ml HAT培养基(20%FBS, HAT l x,其余为 DMEM), 反复吹吸, 吸出培养基放入 50ml离心管内, 台盼蓝细胞计数, 调整细胞浓度为 2x l05个 /ml, 加入 96孔板, 100 ul/孔, 放入二氧化碳培养箱中过夜。 此操作适用于所有需 要用到小鼠腹腔伺养细胞的实验。

  2.2骨髓瘤细胞准备:骨髓瘤细胞 P3X63Ag8.653购自中科院上海生命科学研究院 细胞资源中心,将其培养至对数生长期, 1000 rpm下离心 5分钟,用不含 FBS的 DMEM 悬浮, 1000 rpm下离心 5分钟, 轻弹底部, 用不含 FBS的 DMEM培养基悬浮, 台盼 蓝计数, 细胞活性为 95%。

  收集与 CD20抗原共培养 6天后的淋巴细胞, 台盼蓝计数活细胞, OOrpm下离 心 5分钟, 弃上清, 轻弹底部, 用少量不含 FBS的 DMEM培养基悬浮; 与同样数量 的骨髓瘤细胞充分混匀, 补 DMEM培养基至 40ml, 2000rpm下离心 5分钟, 弃上清; 加入 2ml无菌 pronase溶液 (CalBiochem, 53702), 轻微悬浮细胞团后, 作用 2 分钟, 加入 3-5ml FBS终止, 再加入电融合溶液至 40ml, 2000 rpm离心 5分钟, 弃 上清; 加入少量电融合溶液轻轻悬浮细胞团后, 补加至 40ml, 2000rpm离心 5分钟, 弃上清; 轻弹底部, 加入电融合溶液, 细胞计数, 调节细胞至 2xl06个 /ml, 分成 2ml/ 管; 按照 2ml体积的秒数进行设定, 启动电融合装置 (BTX); 融合后, lOOOrpm离 心 5分钟, 弃上清;加入少量 HAT培养基悬浮细胞后,加入适量体积的 HAT培养基, 按照融合时候的淋巴细胞加入量, lxlO6个 /板, 加入之前铺好伺养细胞的 96孔板中, 放入二氧化碳培养箱中进行培养。

  融合后 7天, 对 HAT培养基进行 1/2换液, 融合后 10天, HAT培养基全换液。 2.4细胞上清抗原特异性 ELISA检测:

  包被: 融合后 12天,用双套 ELISA法检测特异性抗体,一套为表达 CD20的 293 细胞膜包被,一套为未转染 293细胞膜包被; 4°C过夜包板,浓度为 50万个细胞膜 /50ul/ 孔, 包被液为 PH 8.3的 1%BSA PBS。 封闭: 用 PBST洗板 3次后以 10%脱脂牛奶粉 PBS封闭, 室温孵育 1小时; 然后用 PBST洗板 3次。 加样: 吸出 50ul细胞上清至孔 中, 阴性对照为 1:1000人血清 (健康成人捐献), 阳性对照为 O.lug/ml美罗华注射液; 室温孵育 2小时后, 用 PBST洗板 3次。 二抗: 然后加入次辣酸根过氧化酶标记的羊 抗人 IgGl (Caltag), 50 ul/孔, 室温孵育 1小时后, 用 PBST洗板 3次。 显色: TMB 显色, 50ul/ml TMB, 10〜15分钟后以 2M 盐酸终止显色反应; A45。nm读数。

  第一次检测后,秒速飞艇官网开奖号码 选择阳性孔进行扩大至 4个 96孔, 过 2天, 对所扩孔进行检测, 确定阳性孔, 扩大至 24孔。 待 24孔细胞长至孔底约 1/3, 则进行 ELISA检测。 此方 法同样适用于后期抗体的检测。

  样品准备: 将要比较的抗体, 即已知浓度的纯化抗体或由步骤 2.6定量检测后已 知所含抗体浓度的细胞培养上清, 稀释到 4-8个相同浓度 (120nM, 40nM, 13.1nM, 4.4nM)。然后按 2.4中描述的步骤进行 ELISA检测。 由于所有样品事先调整到相同抗 体浓度, OD值的差异将由抗体的亲和力引起。 OD值越高相对亲和力就越高。 使用 Prism软件作图和计算出相对每一抗体的亲和力。综合实施例 3〜5和此检验结果, 选 出抗原亲和力和功能学效能最高的 10个细胞生长孔, 即 1.1、 1.4、 1.6、 1.36、 1.72、 1.89、 1.105、 1.134、 1.146、 1.176。

  于亚克隆前 1天或者是当天采集小鼠腹腔伺养细胞 (用 HT培养基), 细胞浓度为 lx lO5个 /ml,加入 96孔板, lOOul/孔。对经步骤 2.7检测后筛选的 1.1、 1.4、 1.6、 1.36、 1.72、 1.89、 1.105、 1.134、 1.146、 1.176阳性杂交瘤细胞株分别进行台盼蓝染色计数 后, 将细胞分别按以下浓度铺到板子中: 密度为 5个 /孔, 铺 1块; 1个 /孔, 铺 1块; 0.5个 /孔, 铺 2块。 放入二氧化碳培养箱中进行培养 5-7天后, 经倒置显微镜从孔底 观察细胞, 用记号笔圈下确认为单克隆的孔。 只转移这些单克隆孔的细胞培养上清, 50μ1/孔, 进行 ELISA检测 (见 2.4方法)。在经 ELISA确定抗原阳性的孔里, 根据细胞 状态和 OD值, 从被亚克隆的每杂交瘤细胞株 (1.1、 1.4、 1.6、 1.36、 1.72、 1.89、 1.105、 1.134、 1.146、 1.176)中选取最好的 3-5个单克隆细胞孔的上清进行下步骤 (2.9)鉴定。

  冻存液配制: 10% DMSO, 60% FBS, 30% DMEM, 放于冰上预冷, 细胞吹悬后, 放入离心管中, 台盼蓝计数, 离心, 弃上清, 加入预冷冻存液, 按 2~5xl06个 /管, 进 行冻存。细胞放入程序降温盒(Nalgene)后置于 -70°C冰箱过夜, 第二天转入液氮中。

  取出在 225cm2方瓶培养了 10天左右的细胞上清,离心,去掉细胞碎片,经 rProtein A亲和层析进行抗体纯化。上样: pH7.4的细胞培养上清经 0.22um虑膜过滤后直接上 样; 流洗: pH7.4 PBS 流洗, 10倍的柱床体积; 洗脱: pH3.0甘氨酸溶液, 每段 0.5ml 收集洗脱液;读每段 OD280,将含有抗体的各段混合。再检测 OD280,按 1.580D=lmg 计算抗体浓度。 将收集的抗体溶液过滤 0.22um的滤器后无菌保存。 跑 SDS-PAGE胶 核实纯化抗体纯度。 做 LAL测试确定无内毒素污染 (Genscript, Cat: L00350), 将 此纯化抗体用于细胞毒功能测试 (见下述 ADCC、 CDC和凋亡实验)。

  按 lxlO5个 /孔, 将 Ramos、 Raji和 Daudi 细胞铺入 96孔板。 在 37°C 、 5% C02的细胞培养箱中细胞和不同浓度的待测试抗体共孵育 10分钟, 其中待测试抗体为实 施例 2中得到的细胞上清抗体或实施例 6中得到的亲和力成熟抗体, 阳性对照为美罗 华, 阴性对照为纯化的人 IgG (;从健康人的血清纯化制备)。 然后加入正常人血清使其 在培养液中终浓度为 10%。 在 37°C 、 5% C02的细胞培养箱中, 将细胞、 不同浓度 的不同抗体与人血清共孵育 60分钟后, 通过 CellTiterGlo试剂盒测定细胞裂解率。如 为筛选杂交瘤培养上清, 则需要根据定量 ELISA 的上清中含抗体浓度的结果, 将要 筛选的众多上清抗体浓度调释至 l(^g/ml, 然后比较在相同浓度下各抗体的 CDC功 效, 以筛选出高 CDC功效的抗体杂交瘤抗体株。 使用 Prism软件作图和计算 EC50。 结果见图 1、 图 2、 图 3和表 1、 表 2。

  表 2:对亲和力成熟后 CHO细胞表达纯化人抗体的 CDC功能学筛选 (表中排序抗体的 来源见实例 6)

  反应: 取 75ul的效应细胞至靶细胞和抗体的混合液中, 37°C孵育 4小时, 离心 板子, 1000 rpm离心 5分钟,转移上清至铺到黑色透明底 96孔板中(Coming), lOOul/ 孔, 板子放到酶标仪 (Luminescence Plate Reader) 读数。 结果例举见图 4、 图 5、 图 6和表 3、 表 4。 表 3 : 对不同的人杂交瘤细胞株上清液的 ADCC功能学筛选

  表 4:对亲和力成熟后 CHO细胞表达纯化人抗体的 ADCC功能学筛选例举 (表中排序 抗体的来源见实例 6)

  按 lxlO5个 /孔, 将 Ramos、 Raji和 Daudi 细胞铺入 96孔板。 在 37°C 、 5% C02的细胞培养箱中细胞和不同浓度的待测试抗体 H2L10 (来自实施例 6)共孵育 48小时, 其中阳性对照为美罗华, 阴性对照为纯化的人 IgG。 48小时共孵育培养后, 取出 96 板,用 PBS洗涤 2次,以每孔 lOOul细胞培养液悬浮细胞,每孔加入 lul FITC-Annexin V (eBioscinece cat#: 88-8005 ) 并混合均匀, 室温避光染色 15分钟, 用 PBS洗涤 3 次。 以 200ul PBS悬浮细胞, 加样入细胞计数板, 在荧光显微镜计数细胞总数和染色 的凋亡细胞数求出细胞凋亡率。 结果见表 5。 结果显示: H2L10 在凋亡和 CDC实验 中, 药效比美罗华强约 2倍, 在 ADCC试验中, 与美罗华等效。

  表 5: H2L10和美罗华之凋亡、 补体介导的细胞毒、 抗体介导细胞毒功效对比 (H2L10 来源见实例 6)。 细胞凋亡、 抗体介导细胞毒、 补体介导的细胞毒实验是三个主要的抗 癌药物药效学试验。 半数有效药物浓度 (EC5。)是比较不同药物药效学的标准指标。 表 中显示的实验是以美罗华为对照对 H2L10进行的背靠背药效学实验的结果。

  经免疫、 融合以及单克隆化后, 基于亲和力和细胞功能学实验结果选取抗 CD20 单克隆抗体细胞株 1.105.3为模板做抗体亲和力成熟实验。 抗体基因重链和轻链的序列分析。抗 CD20单克隆抗体细胞 1.105.3的总 RNA采 用 Invitrogen公司的 Trizol® reagent试剂盒(15596-026)进行提取; 接着采用 Takara 公司的 5 RACE FULL试剂盒 (D315 ) 中的随机引物, 以总 RNA为模板, 反转录为 第一链 cDNA, 并按照试剂盒的说明书操作步骤, 在 5端加上接头; 然后用试剂盒 自带的接头引物, 分别和人重链基因 IgGl恒定区特异引物以及轻链基因 κ链恒定区 特异性引物进行扩增得到抗 CD20单克隆抗体 (本文中称其为 野生型抗体)基因的 重链可变区和轻链可变区。 用于 PCR扩增的重链和轻链特异引物是:

  将 PCR扩增产物克隆到 T载体 (Takara, D101A)中, 并进行测序, 测序得到一致 的重链可变区和轻链可变区。

  为了提高该抗体的亲和力, 以构建的单链抗体 scFv为模板, 进行随机突变, 并 将突变的单链抗体进行噬菌体展示, 然后通过 ELISA筛选得到更高亲和力的抗体。 根据上一步测序结果, 设计重链可变区和轻链可变区特异性引物, 并分别在重链可变 区 5,端和 3,端加上 Sfil位点和 Xhol位点, 轻链可变区 5,端和 3,端加上 Nhel位点和 Notl位点, 重链可变区 (VH)和轻链可变区 (VL)扩增引物如下:

  分别以完全正确的 VH和 VL克隆为模板, PCR扩增重链可变区和轻链可变区后, 酶切, 分步克隆到噬菌体展示载体 pFL249 (基因合成构建), 进行测序验证。

  从单克隆密度适宜的平板上挑取单克隆到 96孔细菌培养板进行培养和诱导表达, 收集上清进行 ELISA检测,在 OD值比野生型高的单克隆中,根据 OD值从高到低选 择 200个单克隆进行测序。 分析测序结果, 去除 FR区突变的非人源克隆后, 根据 OD值, 从高到低, 分别 选择 20个突变的克隆的 VH和 VL用于构建全长抗体。

  6.4.1 根据之前的结果, 设计重链可变区和轻链可变区特异性引物, 并分别在重 链可变区 5,端和 3,端加上 Sfil位点和 Sail位点, 轻链可变区 5,端和 3,端加上 Sfil位 点和 Bsiwl位点, 重链可变区和轻链可变区扩增引物如下:

  分别以野生型的 VH和 VL克隆, 以及突变后的 20个 VH和 20个 VL克隆为模板, PCR扩增重链可变区和轻链可变区后, 酶切, 分别克隆到含有人的 IgGl恒定区和人 的 κ恒定区 pCI载体 (; Promega, E1731)中, 并进行测序验证。

  按前述实施例 1中 2.6步骤方法进行 40个抗体上清中抗体浓度定量,然后按前述 实施例 1中 2.7步骤方法进行相对亲和力排序。 结果如图 7、 图 8和表 6所示: 40个 突变体的上清的亲和力相比原始细胞株 1.105.3都有 10〜20倍不同程度的提高。分别 选定 5个亲和力最高的重链 H2、 H8、 Hll、 H16、 H19和 5个亲和力最高的轻链 L3、 L6、 L10、 L15、 L18。 表 6:突变后的重链和轻链的亲和力排序 (KD为解离常数 (单位: nM),是通过 Prism 软件以亲和力排序 ELISA数据计算得到的)

  经最终的测序验证,表 7所示的前 10个抗体的重链恒定区为人 IgGl重链的恒定 轻链恒定区为人 κ链的恒定区, 重链可变区和轻链可变区的氨基酸序列如下: 6.5.1重链可变区序列及其互补决定区 (CDR)

  7.1 本发明的抗体 H2L10治疗人 B细胞淋巴瘤 Raji细胞侵润瘤模型的药效学试 验

  静脉注射 107Raji淋巴瘤细胞形成小鼠淋巴瘤疾病模型。 分五组分别为 1.生理盐 水组 (无抗体)、 2.美罗华组 (单次剂量为 3.5mg/kg小鼠体重)、 3.H2L10低剂量组 (单次 剂量为 lmg/kg)、 4.H2L10中剂量组 (;单次剂量为 3.5mg/kg)和 5.H2L10高剂量组 (;单次 剂量为 10mg/kg)。 癌细胞静脉注射后 7天开始给药。 腹腔注射每周一次。 结果见图 10。

  静脉注射 107Raji淋巴瘤细胞形成小鼠淋巴瘤疾病模型。 分五组分别为 1.生理盐 水组 (无抗体)、 2.美罗华组 (单次剂量为 3.5mg/kg)、 3.H2L10 低剂量组 (单次剂量为 lmg/kg)、 4.H2L10中剂量组 (;单次剂量为 3.5mg/kg)和 5.H2L10高剂量组 (;单次剂量为 10mg/kg)。 癌细胞静脉注射后 7天开始给药。 腹腔注射每周一次。 结果见图 11。

  7.2 H2L10治疗人 B细胞淋巴瘤 Raji细胞原位移植瘤的抑瘤试验

  小鼠接种人 B细胞淋巴瘤后观察肿瘤生长情况, 待肿瘤体积为 40-100 mm3左右 时,按瘤体积大小进行筛选,瘤体积过大及未成瘤者不予入选。筛选后随机分为 3组: 1.生理盐水组、 2.美罗华组、 3.H2L10, 其中美罗华组和 H2L10组的给药剂量均为 5 mg/kg小鼠体重。 腹腔注射每周一次。 实验结果见图 12。

  重复进行实施例 1〜6的实验以筛选更多的符合本发明要求的抗体。 结果发现, 具有重链 A137H (其可变区序列为 SEQ ID NO: 9)和轻链 A137L (其可变区序列为 SEQ ID NO: 10)的全人源 CD20抗体 A137具有更好的效果。

  用 A137进行动物体内药效试验。注射了生理盐水的人 B细胞淋巴瘤模型小鼠在 约 21天时开始出现死亡, 至 40天时全部死亡; 而注射美罗华的小鼠组在约 44天时 开始出现死亡, 到约 130天时全部死亡; 相比之下, 注射 A137的小鼠组在约 47天时 开始死亡, 且到 140天以后仍有超过 20%的小鼠存活 (见图 16)。 这证明 A137的疗效 优于美罗华。 从图 17可以看出, 在小鼠体重维持方面, A137比 3倍剂量的美罗华的 效果更好: 到 150天时, 接受 A137的小鼠组的体重变化仍然缓慢, 且体重减少维持 在 15%以内; 而高剂量美罗华组小鼠在约 100天后体重下降就超过 15%, 在约 130 天时体重下降超过 35%。

  本发明正是针对 Rituximab不足之处而进行的新分子创制: ( 1 ) 变鼠人嵌合抗体 为全人源抗体 (2 ) 通过新药物的提升, 使其针对其他瘤细胞的 CDC, ADCC和凋亡 能力增强以提高杀瘤疗效。 (3 ) 治疗人 B细胞淋巴瘤 Raji细胞侵润瘤模型的药效学 试验和治疗人 B细胞淋巴瘤 Raji细胞原位移植瘤的小鼠药效学试验, 在生存期和抑 制肿瘤生长上均显示不低于或比美罗华更好的疗效。

  本发明的抗体分子可作为药物候选分子将会对淋巴瘤和自身免疫性疾病有更好 的疗效, 有益于人类疾病的治疗。 参考文献

  8 徐志巧, 刘培杰, 高岭, 刘建民, 李宁, 帖晓静.美罗华联合 CHOP治疗 B细胞性非 霍奇金淋巴瘤的临床研究 [J]. 中华肿瘤防治杂志.2007, 4(20): 1589-1590.